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Ibidi傷口愈合(culture-insert)系列產(chǎn)品應(yīng)用指南

date:2019-03-02 13:55:07

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  細(xì)胞遷移發(fā)生在很多重要的生理過(guò)程中。比如,胚胎發(fā)育,組織損傷和傷口愈合的過(guò)程中細(xì)胞的遷移就是受到調(diào)控的。相反,細(xì)胞遷移在許多病理情況比如癌癥轉(zhuǎn)移和炎癥下是失調(diào)的。不足為奇,許多細(xì)胞遷移的原理已經(jīng)在很多情況下研究過(guò)了。

  

  1.      傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)的應(yīng)用

  

  傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)是廣泛用于不同條件下分析細(xì)胞遷移的方法。

  

  他們有助于理解下面相關(guān)的科學(xué)問(wèn)題。

  

  1 不同條件下遷移和傷口愈合研究:

  

  細(xì)胞如何在不同條件下遷移(比如,被特定的化合物/增強(qiáng)劑/抑制劑處理后,SiRNA或者CRISPR/Cas9基因沉默后,底物硬度改變后,或者基質(zhì)組成改變后)

  

  2 高通量藥物篩選:

  

  哪一種藥物可以改變特定細(xì)胞的遷移速率(比如,癌細(xì)胞)

  

  3 細(xì)胞相互作用研究:

  

  細(xì)胞是保持相互接觸,還是異常遷移。遷移過(guò)程中細(xì)胞是如何相互作用的。 細(xì)胞自主性的遷移能力如何?

  

  4 2D侵襲實(shí)驗(yàn):

  

  兩種不同類型細(xì)胞如何相互作用(比如腫瘤細(xì)胞和成纖維細(xì)胞)

  

  和一般的傷口愈合和遷移不同,定向遷移實(shí)驗(yàn),比如細(xì)胞趨化實(shí)驗(yàn),測(cè)定在2D或者3D環(huán)境下濃度梯度依賴的細(xì)胞運(yùn)動(dòng)。

 

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  2D侵襲實(shí)驗(yàn)中兩種不同類型的細(xì)胞                                  抑制劑或增強(qiáng)劑對(duì)傷口愈合影響的示例

  

  2.      如何做一個(gè)傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)

  

  典型的傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)的結(jié)果就是隨著時(shí)間的變化細(xì)胞覆蓋面積(傷口閉合)的變化。

  

  進(jìn)行傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)是一個(gè)非常簡(jiǎn)單的操作。

  

  1 在細(xì)胞單層間制造出一個(gè)物理傷口。

  

  2 在不同時(shí)間點(diǎn)進(jìn)行拍照,或者進(jìn)行實(shí)時(shí)成像觀察細(xì)胞遷移到傷口的過(guò)程。

  

  3 采用手動(dòng)或者自動(dòng)化軟件分析傷口閉合的速率,這就是典型的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

  

  盡管傷口愈合實(shí)驗(yàn)很簡(jiǎn)單,但是許多因素會(huì)影響到實(shí)驗(yàn)結(jié)果。因此要控制好這些因素。

  

  下面我們討論一下傷口愈合的實(shí)驗(yàn)設(shè)置和原理。此外,我們還要討論一些需要標(biāo)準(zhǔn)化的參數(shù),從而獲得可重復(fù),穩(wěn)定的結(jié)果。

  

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  MCF7細(xì)胞傷口形成后傷口閉合的活細(xì)胞成像圖

  

  傷口愈合實(shí)驗(yàn)流程圖

  

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  開(kāi)始實(shí)驗(yàn)之前需要回答以下問(wèn)題:

  

  1 能否重復(fù)細(xì)胞培養(yǎng)條件?

  

  由于許多外部因子可能影響到傷口愈合實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,這就需要事先開(kāi)發(fā)出一個(gè)標(biāo)準(zhǔn)的方法學(xué)。

  

  整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中的步驟需要保持一致。如果可以,每一次實(shí)驗(yàn)所用到的設(shè)備,細(xì)胞代數(shù),培養(yǎng)液替換次數(shù),試劑和耗材都應(yīng)當(dāng)一樣。

  

  2 應(yīng)該用哪一種細(xì)胞培養(yǎng)器皿?

  

  細(xì)胞培養(yǎng)器皿需要有一個(gè)薄底(-170μm),這樣對(duì)于高分辨率活細(xì)胞成像和倒置顯微鏡是出色的。(比如,ibidi多聚物玻片)培養(yǎng)器皿的大小需要便于傷口的形成。根據(jù)樣本數(shù)量,ibidi有μ培養(yǎng)皿(35mm高壁)的培養(yǎng)插件或者μ-24孔培養(yǎng)板可以選擇使用。如果不需要高分辨率熒光顯微鏡成像,培養(yǎng)插件也可以自己插入到各種規(guī)格的培養(yǎng)器皿里,比如培養(yǎng)皿,細(xì)胞培養(yǎng)小室,多孔板。

  

  3 應(yīng)該使用哪種基底?

  

  哪種基底取決于細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)條件。組織處理的基底可以給細(xì)胞提供足夠的吸附。

  

  就像ibidi多聚物玻片,適用于大多數(shù)細(xì)胞類型。然而有些細(xì)胞類型需要一些特殊的包被。

  

  關(guān)于詳細(xì)的如何自己包被μ玻片和μ培養(yǎng)皿可以查看ibidi細(xì)胞包被的應(yīng)用指南。

  

  4 需不需要抑制細(xì)胞增殖?

  

  在傷口愈合實(shí)驗(yàn)中,細(xì)胞不僅僅會(huì)遷移到傷口處,而且也會(huì)增殖。在形成傷口前,可以使用增殖抑制劑比如mitomycin 或者 actinomycin C處理細(xì)胞來(lái)抑制增殖。但是需要事先確定好劑量和相應(yīng)的對(duì)照,這樣細(xì)胞不會(huì)因?yàn)樯L(zhǎng)抑制的藥物而造成細(xì)胞凋亡或者改變了遷移能力。

  

  5 理想的細(xì)胞密度是多少?

  

  理想狀態(tài)下,傷口愈合實(shí)驗(yàn)應(yīng)該是在顯微鏡下觀察到細(xì)胞單層長(zhǎng)滿后立即進(jìn)行。細(xì)胞接種密度需要根據(jù)不同細(xì)胞類型來(lái)分別確定。出色的狀態(tài)就是細(xì)胞在接種24小時(shí)形成單細(xì)胞層。

  

  6 如何形成傷口?

  

  生成的傷口的一致性對(duì)于傷口愈合實(shí)驗(yàn)是其重要。目前有幾種在單層細(xì)胞形成傷口的方法:用針或者槍頭劃,放入一個(gè)插件或者膜具,化學(xué)表面處理,或者用電處理等,不同方法各有優(yōu)缺點(diǎn)。

  

  7 傷口閉合如何監(jiān)測(cè)?

  

  在不同時(shí)間點(diǎn)進(jìn)行拍照觀察傷口閉合是可以的。但是對(duì)于絕大多數(shù)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)來(lái)講,活細(xì)胞成像是精確,也是很方便地監(jiān)測(cè)傷口閉合的。

  

  3.      傷口愈合實(shí)驗(yàn)流程:

  

  1樣本制備

  

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  步驟:使用Ibidi培養(yǎng)插件形成的傷口,由于無(wú)細(xì)胞傷口的大小固定,這就確保了高度可重復(fù)性。

  

  在合適的培養(yǎng)器皿里面選擇恰當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)插件。接種培養(yǎng)細(xì)胞到顯微鏡下長(zhǎng)滿,形成單層。讓細(xì)胞生長(zhǎng)大約24小時(shí),如果有必要,可以用增殖抑制劑處理細(xì)胞,然后移除培養(yǎng)插件形成傷口。

  

  Ibidi的解決方法:

  

  Ibidi培養(yǎng)插件2孔,3孔,四孔是特定大小細(xì)胞傷口的硅膠插件,用于傷口愈合,遷移,2D侵襲實(shí)驗(yàn),細(xì)胞共培養(yǎng)。

  

  他們有預(yù)裝在μ35mm培養(yǎng)皿中的獨(dú)立插件,也有25個(gè)整體放在運(yùn)輸培養(yǎng)皿中自己手動(dòng)插入的。

  

  它提供了一種快捷便利的實(shí)驗(yàn)方法。

  

  培養(yǎng)插件兩孔24是預(yù)裝在24孔板里面的,是非常劃算的,可以直接用于高通量實(shí)驗(yàn)。

  

  Ibidiμ兩孔載玻片的兩個(gè)孔的大小剛好可以插入培養(yǎng)插件。

  

  2 活細(xì)胞成像

  

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  步驟:絕大多數(shù)情況下,傷口形成后立即使用相差顯微鏡監(jiān)測(cè)細(xì)胞的狀況。既可以在不同時(shí)間點(diǎn)(比如6和12小時(shí)后)拍攝傷口照片,也可以進(jìn)行活細(xì)胞成像。通常監(jiān)測(cè)細(xì)胞24小時(shí)左右就足夠了。想要精確地分析,那么整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中就需要觀察傷口的同一個(gè)位置。

  

  Ibidi的解決方法:

  

  Ibidi加熱和氣體孵育系統(tǒng)在顯微鏡下提供了一個(gè)生理環(huán)境。使得在傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)過(guò)程中可以進(jìn)行活細(xì)胞成像。

  

  3 數(shù)據(jù)分析

  

  步驟:一個(gè)典型的傷口愈合或者遷移實(shí)驗(yàn)生成GB數(shù)量的圖像數(shù)據(jù),需要通過(guò)手動(dòng)圖像分或者自動(dòng)化軟件析進(jìn)一步處理。眾多的實(shí)驗(yàn)方法中,主要的結(jié)果就是傷口閉合的速度。其他結(jié)果可能包括無(wú)細(xì)胞區(qū)域和細(xì)胞覆蓋區(qū)域的測(cè)定。

  

  Ibidi的解決方法:

  

  使用傷口愈合ACAS圖像分析軟件,ibidi提供了一種省時(shí)全自動(dòng)化定量分析傷口愈合和遷移實(shí)驗(yàn)的方法。

  

  它包括分析無(wú)細(xì)胞區(qū)域,細(xì)胞覆蓋區(qū)域以及傷口閉合速度。

  

  4.      使用不同方法在細(xì)胞單層制造傷口:

  

  1 插入:接種細(xì)胞前,在培養(yǎng)表面置入插件/模塊來(lái)物理性排除細(xì)胞。

  

  2 劃痕:在表面劃痕(劃痕實(shí)驗(yàn))機(jī)械去除細(xì)胞。

  

  3 阻抗:在特定區(qū)域內(nèi)用電壓去除細(xì)胞。

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  Ibidi提供了三種不同的培養(yǎng)插件用于形成傷口:ibidi培養(yǎng)插件2孔,3孔以及4孔。

  

  由于特殊設(shè)計(jì)的底部,培養(yǎng)插件黏附在表面,阻礙了壁下任何細(xì)胞的生長(zhǎng)。移除培養(yǎng)插件后,新形成的無(wú)細(xì)胞傷口處沒(méi)有任何殘留。這種方法可以重復(fù)地形成高度一致的沒(méi)有任何細(xì)胞的傷口

  

  當(dāng)放置在平整,干凈的表面,培養(yǎng)插件2孔給培養(yǎng)的細(xì)胞提供了兩個(gè)儲(chǔ)液池,中間被500μm厚度的壁給分隔開(kāi)。細(xì)胞接種在儲(chǔ)液池中培養(yǎng),一直到他們貼壁,形成單細(xì)胞層。移除表面的硅膠插件后會(huì)形成兩個(gè)精確大小的細(xì)胞斑塊,由一個(gè)大小和分割壁一樣寬度的區(qū)域所分開(kāi)。接著就可以通過(guò)活細(xì)胞成像或者在不同時(shí)間點(diǎn)拍照來(lái)監(jiān)測(cè)細(xì)胞遷移。

  

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  培養(yǎng)插件3孔提供了三個(gè)細(xì)胞儲(chǔ)液池。它可以形成兩個(gè)無(wú)細(xì)胞傷口,每個(gè)500μm. 因而適用于分析兩個(gè)技術(shù)重復(fù)樣本或者不同細(xì)胞類型的遷移。

  

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  培養(yǎng)插件4孔提供四個(gè)細(xì)胞培養(yǎng)儲(chǔ)液池。除了四個(gè)500μm的無(wú)細(xì)胞區(qū)域外,還包括一個(gè)1mm的中間傷口區(qū)域。培養(yǎng)插件4孔可以觀察四個(gè)技術(shù)重復(fù)樣本或者不同細(xì)胞類型的遷移。

  

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  培養(yǎng)插件3孔/4孔都可以在藥物處理或者基因沉默/過(guò)表達(dá)(比如通過(guò)CRISPR/Cas9, SiRNA, mRNA)

  

  后進(jìn)行細(xì)胞遷的分析。重要的是,未處理的對(duì)照組可以在同一個(gè)培養(yǎng)器皿里面接種,分析,共享同樣的培養(yǎng)液。

  

  和其他傷口形成技術(shù)不同,ibidi的培養(yǎng)插件適合2D侵襲實(shí)驗(yàn)和共培養(yǎng)實(shí)驗(yàn),同時(shí)可以實(shí)驗(yàn)

  

  兩種,三種甚至四種細(xì)胞類型或者處理方式。

  

  5.      ibidi培養(yǎng)插件部分客戶發(fā)表文章:

  

  Inhibition of Tunneling Nanotube (TNT) Formation and Human T-cell Leukemia Virus Type 1 (HTLV-1) Transmission by Cytarabine.

  

  Scientific Reports, 2018, 10.1038/s41598-018-29391-w

  

  Stapled peptide inhibitors of RAB25 target context-specific phenotypes in cancer.

  

  Nature Communications, 2017, 10.1038/s41467-017-00888-8

  

  Endothelial Notch signalling limits angiogenesis via control of artery formation.

  

  Nature Cell Biology, 2017, 10.1038/ncb3574

  

  EphA2 Drives the Segregation of Ras-Transformed Epithelial Cells from Normal Neighbors.

  

  Current Biology, 2016, http://dx.doi.org/10.1016/j.cub.2016.09.037

  

  A molecular mechanotransduction pathway regulates collective migration of epithelial cells.

  

  Nat Cell Biol, 2015, 10.1038/ncb3115

  

  Control of ground-state pluripotency by allelic regulation of Nanog

  

  Nature, 2012, 10.1038/nature10807

 

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